双荧光素酶报告基因实验指南
中级分子生物学·1-2天
双荧光素酶报告基因实验(Dual-Luciferase Reporter Assay)是验证 DNA-RNA、蛋白-DNA 或 RNA-RNA 相互作用的经典方法。通过将预测的调控元件(如 miRNA 结合位点、启动子、转录因子结合位点)克隆至报告载体,与调控分子(miRNA、转录因子)共转染,检测萤火虫和海肾荧光素酶活性比值变化来定量评估基因表达调控。广泛应用于 miRNA 靶基因验证和转录因子调控研究。
1实验步骤
- 1【报告载体构建】
- 2选择载体:psiCHECK-2(含萤火虫和海肾双报告基因)、pmirGLO(含萤火虫和海肾)、或 pGL3-basic(含萤火虫)
- 3靶序列选择:
- 4 - miRNA 靶基因验证:3' UTR 序列(含预测的 miRNA 结合位点)
- 5 - 转录因子验证:靶基因启动子区域(含转录因子结合位点)
- 6 - 突变对照:突变 miRNA 结合位点或转录因子结合位点(作为阴性对照)
- 7克隆方法:
- 8 - 传统酶切克隆:使用 XhoI/NotI 或多克隆位点酶切连接
- 9 - 无缝克隆:Gibson Assembly 或 In-Fusion
- 10 - 合成:直接合成含调控元件的基因片段
- 11转化与验证:DH5α 感受态细胞转化,氨苄青霉素筛选,测序确认
- 12
- 13【细胞接种与共转染】
- 14细胞选择:HEK293T(转染效率高)或目标细胞
- 15接种密度:24孔板 60-70% 汇合度
- 16实验分组:
- 17 - 实验组:报告载体 + 调控分子(如 miRNA mimics)
- 18 - 对照组1:报告载体 + NC mimics(验证特异性)
- 19 - 对照组2:突变报告载体 + 调控分子(验证结合位点)
- 20 - 空白组:报告载体 only(基线活性)
- 21转染试剂:Lipofectamine 3000 或 RNAiMAX(如同时转染 siRNA)
- 22
- 23【细胞裂解】
- 24培养时间:37℃培养 24-48 小时
- 25裂解:吸去培养基,PBS 洗涤 1 次
- 26被动裂解:加入 100μL Passive Lysis Buffer,室温摇晃 15 分钟
- 27离心:12000rpm 离心 1 分钟,取上清
- 28
- 29【荧光素酶检测】
- 30萤火虫荧光素酶检测:
- 31 - 取 20μL 细胞裂解液加入检测板
- 32 - 加入 100μL 萤火虫荧光素酶检测试剂(Luciferase Reagent)
- 33 - 读数(FLuc 单位)
- 34海肾荧光素酶检测:
- 35 - 加入 100μL Stop & Glo Reagent(终止萤火虫反应并启动海肾反应)
- 36 - 读数(RLuc 单位)
- 37计算:RLuc/FLuc 比值代表报告基因活性
- 38
- 39【数据处理与分析】
注意事项
- 萤火虫和海肾荧光素酶活性需分别设阳性对照验证试剂有效性
- 细胞裂解后尽快检测,放置过久会导致酶活性下降
- 报告载体和调控分子共转染比例需优化(1:1 到 1:3)
- 每个实验组设置 3 个技术复孔,CV 值应 < 10%
- 海肾荧光素酶做内参归一化,消除转染效率差异