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流式细胞术实验指南

中级细胞分析·3-4小时

流式细胞术(Flow Cytometry)用于分析细胞表面标志物、胞内蛋白、细胞周期、凋亡等。适用于单细胞悬液的定量分析。

1实验步骤

  1. 1样本制备:收集细胞(悬浮细胞直接收集,贴壁细胞用胰酶消化),PBS 洗涤 2 次
  2. 2细胞计数:调整细胞浓度至 1×10⁶ - 1×10⁷ 细胞/mL
  3. 3封闭:使用 FcR 封闭剂(1μg/10⁶ 细胞)室温封闭 10 分钟,减少非特异性结合
  4. 4表面染色:加入荧光素标记的抗体,4℃避光孵育 30 分钟
  5. 5洗涤:加入 PBS 1-2mL,300g 离心 5 分钟,弃上清,重复 1-2 次
  6. 6死活染料:如需死活鉴定,加入 Zombie染料(1:1000 稀释),室温孵育 15 分钟
  7. 7固定:如需固定,加入 4% PFA 室温固定 15 分钟
  8. 8洗涤:固定后 PBS 洗涤 1 次
  9. 9上机:重悬于 200-500μL PBS 中,用细胞滤网过滤(40μm),去除团聚
  10. 10设置对照:单染对照(调节补偿)、FMO 对照(确定门的位置)、同型对照、空白对照

注意事项

  • 抗体用量需优化,一般 0.25-5μg/10⁶ 细胞,过多会导致非特异性结合
  • 荧光素选择考虑仪器配置和抗原表达水平:高表达用 PE,低表达用 AF488
  • 补偿管必须单染,与样本染色条件完全一致
  • FMO 对照对于弱阳性表达标志物很重要
  • 样本上机后尽快检测,4℃可保存 24 小时