免疫细胞分离与纯化指南(密度梯度离心法)
中级细胞分离·2-3小时
从外周血、骨髓或淋巴组织中分离单个核细胞(PBMC)的标准方法。Ficoll 和 Percoll 是两种最常用的密度梯度离心介质,适用于后续流式、磁珠分选、培养等实验。
1实验步骤
- 1【Ficoll 分离法(常规方案)】
- 2血液采集:用肝素抗凝采血管采集外周血 5-10mL,室温保存,4小时内处理
- 3稀释:用 PBS 或生理盐水 1:1 稀释血液,降低粘度
- 4分层准备:在 15mL 离心管中先加入 3-5mL Ficoll-Paque Plus(密度 1.077g/mL)
- 5加样:倾斜离心管,用移液管沿管壁缓慢加入稀释血液(约 5-8mL),保持清晰分层
- 6离心:室温 400g 离心 30 分钟(升速和降速均设置为 slow brake/无制动)
- 7收集中间层:用移液管小心吸取中间层云雾状单个核细胞层(泛白色),避免吸到上层血浆
- 8洗涤:转移至新管,加入 10mL PBS,300g 离心 10 分钟,弃上清
- 9重复洗涤:重复洗涤 2 次,去除血小板和残留 Ficoll
- 10细胞计数:重悬于 1mL PBS,用血球计数板计数
- 11活性检测:台盼蓝染色检测活率,通常 >95%
- 12
- 13【Percoll 分离法(梯度方案)】
- 14Percoll 梯度配制:
- 15 - 母液:Percoll 原液 + 10× PBS (1:9) 配成 100% Percoll
- 16 - 制作不连续梯度:40% Percoll (1.06g/mL) + 60% Percoll (1.08g/mL) + 80% Percoll (1.12g/mL)
- 17血液处理:同上,用 PBS 1:1 稀释
- 18加样:在梯度管中缓慢加入稀释血液,避免打乱梯度
- 19离心:室温 500g 离心 30 分钟(无制动)
- 20收集各层:分别收集 40%/60% 界面(单核细胞)、60%/80% 界面(淋巴细胞)、80% 底层(粒细胞)
- 21洗涤:各层细胞用 PBS 洗涤 2 次
- 22注意:Percoll 梯度可分离更精细的细胞亚群,如不同密度的 T/B 细胞
- 23
- 24【组织来源单个核细胞分离】
- 25淋巴结/脾脏:放入含 PBS 的培养皿中,用剪刀剪碎,通过 40μm 滤网研磨
- 26骨髓:用注射器抽取骨髓,用 PBS 冲洗,通过滤网
- 27肿瘤组织:剪成 1-2mm 小块,酶消化(胶原酶 + 透明质酸酶)30-60 分钟,离心收集
- 28后续处理同上,先用 PBS 洗涤,再进行密度梯度分离
注意事项
- 血液采集后尽快处理,室温放置不宜超过 4 小时
- 离心时关闭刹车(无制动),保证分层清晰
- 吸取中间层要慢且稳,避免吸到上层血浆或下层红细胞
- 洗涤去除血小板需重复 2-3 次,避免影响后续培养
- 活性检测用台盼蓝,活率 >90% 才可进行下游实验